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慢病毒系列|讓你“隨心所欲”調(diào)控基因(CRISPR/Cas9文庫篇)

時間:2022-09-23 熱度:


CRISPR/Cas9系統(tǒng)及其應(yīng)用
 

隨著CRISPR/Cas9技術(shù)的興起,實(shí)現(xiàn)了對動植物基因組編輯的廣泛應(yīng)用。CRISPR/Cas9技術(shù)源自Ⅱ型CRISPR/Cas系統(tǒng),Cas9是一種核酸內(nèi)切酶,雙tracrRNA:crRNA設(shè)計(jì)成為單向?qū)蛄校╯gRNA),其5’端的20個核苷酸序列通過堿基互補(bǔ)配對原則與靶位點(diǎn)的DNA結(jié)合,3’端與Cas9蛋白結(jié)合。sgRNA與DNA靶序列特異性結(jié)合,使Cas9能夠在特異性位點(diǎn)使靶細(xì)胞基因組DNA雙鏈斷裂(如圖1)。隨后,靶細(xì)胞通過非同源端連接產(chǎn)生InDels,實(shí)現(xiàn)基因敲除;或提供dsDNA供體模板通過同源重組修復(fù)的方法實(shí)現(xiàn)基因的定點(diǎn)突變或是基因插入。對Cas9蛋白關(guān)鍵活性位點(diǎn)D10A和H840A進(jìn)行突變后,使Cas9喪失催化活性但不影響其與目標(biāo)DNA序列結(jié)合的能力。這種突變的Cas9蛋白被稱為dCas9,可應(yīng)用于CRISPR激活(CRISPRa:dCas9與單個轉(zhuǎn)錄激活因子VP64連接可激活目的基因),亦可用于CRISPR干擾 (CRISPRi:dCas9與轉(zhuǎn)錄抑制子KRAB融合后結(jié)合到靶基因TSS位點(diǎn)抑制轉(zhuǎn)錄起始,沉默靶基因的表達(dá)) 。

 

圖1:CRISPR/Cas9系統(tǒng)的工作流程

Jennifer A. Doudna et al., Science. 2014 Nov 28;346(6213):1258096.

 

CRISPR/Cas9系統(tǒng)操作簡單,可針對任何感興趣的靶基因設(shè)計(jì)不同的sgRNA,且擁有獨(dú)特的DNA切割機(jī)制、多重靶點(diǎn)識別能力等特點(diǎn),能夠精確、高效地靶向、編輯、修改、調(diào)節(jié)和標(biāo)記各種細(xì)胞和生物的基因組位點(diǎn)。CRISPR/Cas9系統(tǒng)的誕生,使堿基編輯、轉(zhuǎn)錄調(diào)控和表觀遺傳編輯、基因組規(guī)模的篩選以及細(xì)胞和胚胎治療等方面得到廣泛的發(fā)展和應(yīng)用,CRISPR/Cas9文庫的應(yīng)用也讓基礎(chǔ)研究中大規(guī)模的基因組編輯和篩選成為現(xiàn)實(shí)。在篩選功能增益方面CRISPRa比較有效;在篩選缺失功能方面CRISPRi文庫較RNAi文庫更有效。

 

慢病毒載體是CRISPR/Cas9系統(tǒng)的主要載體之一,因慢病毒有適用宿主范圍廣、感染效率高、具有生物安全性、整合基因到宿主細(xì)胞實(shí)現(xiàn)長期穩(wěn)定表達(dá)的特點(diǎn),可實(shí)現(xiàn)CRISPR/Cas9文庫對靶細(xì)胞有效且準(zhǔn)確的基因編輯。下面就一起來了解慢病毒載體和CRISPR/Cas9相關(guān)的基因編輯系統(tǒng)如何應(yīng)用于基礎(chǔ)研究。


案例1——慢病毒&CRISPR/Cas9文庫(全基因組文庫)

Elaiophylin triggers paraptosis and preferentially kills ovarian cancer drug-resistant cells by inducing MAPK hyperactivation

作者單位:華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院

IF:38.104

 

精細(xì)調(diào)節(jié)的絲裂原活化蛋白激酶(MAPK)信號通路對癌細(xì)胞的存活很重要。經(jīng)前期化合物庫的篩選確定了茶葉素是一種自噬抑制劑。在本研究中證明了茶葉素在多種癌細(xì)胞中通過過度激活MAPK通路誘導(dǎo)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)衍生的細(xì)胞質(zhì)空泡化以及隨后的細(xì)胞凋亡的作用。CRISPR/Cas9全基因組敲除文庫篩選鑒定出MAPK通路中的SHP2是茶葉素誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵靶點(diǎn)。細(xì)胞熱位移實(shí)驗(yàn)(CETSA)和表面等離子體共振(SPR)實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證實(shí)了SHP2與茶葉素直接結(jié)合。通過SHP2敲低或藥理抑制SHP2/SOS1/MAPK通路明顯減弱了茶葉素誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡和自噬抑制。茶葉素通過觸發(fā)細(xì)胞凋亡來克服耐藥性,這提示茶葉素可能為難治性卵巢癌提供一種合理的治療策略。

 

圖2:全基因組CRISPR/Cas9敲除文庫篩流程及茶葉素誘導(dǎo)自噬抑制示意圖。

Guan-Nan Li et al., Signal Transduction and Targeted Therapy. 2022 Sep 12;7(1):317.

 

★文庫來源:購買自Addgene (#1000000049)

 

九游會j9生物可提供本文所涉及的文庫篩選及慢病毒包裝服務(wù)


案例2——慢病毒&CRISPR/Cas9文庫(激活文庫)

Genome-wide CRISPR screen identifies MTA3 as an inducer of gemcitabine resistance in pancreatic ductal adenocarci

作者單位:天津醫(yī)科大學(xué)腫瘤醫(yī)院

IF:9.756

 

臨床胰腺導(dǎo)管腺癌(PDAC)治療失敗的主要原因之一是產(chǎn)生吉西他濱(GEM)耐藥。作者通過CRISPR/Cas9激活文庫篩選發(fā)現(xiàn)MTA3介導(dǎo)了PDAC的GEM耐藥,因此MTA3可能成為潛在聯(lián)合化療的治療靶點(diǎn)。CRISPR文庫篩選顯示MTA3是GEM處理后存活細(xì)胞中富集最多的基因,生物信息學(xué)和組織學(xué)分析提示其與GEM耐藥高度相關(guān)。體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)均證實(shí)MTA3可促進(jìn)胰腺癌細(xì)胞對GEM的耐藥。機(jī)制上,MTA3作為Mi-2/核小體重塑和去乙酰化酶轉(zhuǎn)錄抑制復(fù)合物的組成部分,抑制NF-κB/p65的轉(zhuǎn)錄抑制因子CRIP2的轉(zhuǎn)錄,激活NF-κB信號通路,從而導(dǎo)致GEM耐藥。此外,GEM可通過激活STAT3信號通路上調(diào)PDAC細(xì)胞中MTA3的表達(dá),從而誘導(dǎo)PDAC對GEM產(chǎn)生獲得性耐藥。MTA3在胰腺癌GEM耐藥中起關(guān)鍵作用,有望成為逆轉(zhuǎn)GEM耐藥的治療靶點(diǎn)。

 

圖3:利用CRISPR激活文庫篩選MTA3作為潛在的GEM耐藥相關(guān)基因。

Liangliang Wu et al., Cancer Lett. 2022 Aug 15;548:215864.

 

★文庫來源:人類CRISPR激活文庫購買自Addgene(#1000000078)

 

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案例3——慢病毒&CRISPR/Cas9文庫(lncRNA激活文庫)

Lnc-DC promotes estrogen independent growth and tamoxifen resistance in breast cancer

作者單位:杭州醫(yī)學(xué)院附屬人民醫(yī)院

IF:9.685

 

選擇性雌激素受體調(diào)節(jié)劑(SERMs)—他莫昔芬已被證明在雌激素受體(ER)陽性乳腺癌的治療中是有效的。然而,這種內(nèi)分泌治療的主要障礙是雌激素非依賴性生長導(dǎo)致的耐藥,其潛在機(jī)制尚不完全清楚。本研究探討了長鏈非編碼RNA (lncRNAs)是否參與調(diào)控ER陽性乳腺癌的雌激素非依賴性生長和他莫昔芬耐藥。研究基于CRISPR/Cas9的SAM(協(xié)同激活介質(zhì))文庫確定了候選Lnc-DC。通過分析表明,Lnc-DC能夠通過上調(diào)抗凋亡基因Bcl2和Bcl-xL來減少他莫昔芬誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡。此外,Lnc-DC通過磷酸化(pSTAT3Y705)激活STAT3,隨后誘導(dǎo)細(xì)胞因子的表達(dá)而激活STAT3,形成自分泌環(huán)路。臨床上,Lnc-DC高表達(dá)與患者不良預(yù)后相關(guān),本研究證明Lnc-DC/STAT3/細(xì)胞因子軸在雌激素非依賴性生長導(dǎo)致他莫昔芬耐藥中的功能,Lnc-DC可能是他莫昔芬應(yīng)答的潛在預(yù)測因子。

 

圖4:鑒定Lnc-DC參與雌激素非依賴性和他莫昔芬耐藥。

Wan-Xin Peng et al., Cell Death and Disease. 2021 Oct 25;12(11):1000.

 

★文庫來源:雙載體SAM文庫,購買自Addgene(#61426、#61425)

 

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案例4——慢病毒&CRISPR/Cas9文庫(定制文庫)

Targeting euchromatic histone lysine methyltransferases sensitizes colorectal cancer to histone deacetylase inhibitors

作者單位:德國癌癥研究中心(DKFZ)

IF:7.316

 

結(jié)直腸癌(CRC)一個重要的特征是表觀遺傳失調(diào)。針對晚期癌癥,表觀遺傳藥物與抗腫瘤藥物結(jié)合是一種有前景的治療策略。作者利用合成致死的概念來識別與組蛋白去乙?;?HDAC)抑制劑協(xié)同作用以降低CRC生長的表觀遺傳靶點(diǎn)。研究使用針對614個表觀遺傳調(diào)節(jié)因子定制sgRNA文庫進(jìn)行CRISPR/Cas9篩。⑾智貿(mào)H舊首櫚鞍桌蛋彼酦-甲基轉(zhuǎn)移酶1和2 (EHMT1/2)顯著增強(qiáng)了臨床使用的HDAC抑制劑的抗增殖作用。通過對1066例不同腫瘤分期的結(jié)直腸癌樣本進(jìn)行組織芯片分析,發(fā)現(xiàn)EHMT2蛋白在晚期結(jié)直腸癌低表達(dá),且與不良臨床結(jié)局相關(guān)。機(jī)制上,協(xié)同抑制HDAC和EHMT1/2可引起減少腫瘤細(xì)胞生長的不同機(jī)制,包括細(xì)胞周期阻滯和自噬的調(diào)節(jié)。表觀遺傳水平上,這些化合物增加H3K9乙?;?,降低H3K9二甲基化。功能表型上,協(xié)同抑制HDAC和EHMT1/2可降低患者來源的CRC類器官腫瘤的活力。

 

圖5:聚焦CRISPR/Cas9篩選確定EHMT1和EHMT2敲除對HDAC抑制劑的增敏作用。

Leonhard Valentin Bamberg et al., Int. J. Cancer. 2022;151:1586–1601.

 

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九游會j9生物常用文庫列表

 

 

九游會j9生物體內(nèi)及體外的功能基因篩選方案

 

 

 

九游會j9生物可供篩選表型包括


· 腫瘤轉(zhuǎn)移相關(guān)基因篩選-體內(nèi)
· 細(xì)胞遷移/侵襲相關(guān)基因篩選-體外

· 細(xì)胞克隆形成相關(guān)基因篩選-體外

· 細(xì)胞增殖相關(guān)基因篩選-體外
· 腫瘤耐藥相關(guān)基因篩選-體外

· ......


 

九游會j9生物一直致力于病毒載體的研制服務(wù),擁有10萬+的病毒包裝經(jīng)驗(yàn)/4.6萬+病毒載體庫,包裝GMP級別的病毒質(zhì)粒。九游會j9生物擁有多種慢病毒包裝系統(tǒng):三質(zhì)粒/四質(zhì)粒包裝系統(tǒng)。

 

涵蓋過表達(dá)/干擾、CRISPR/Cas9、Cumate誘導(dǎo)表達(dá)系統(tǒng)、Tet-on/off系統(tǒng)、Cre-loxp系統(tǒng)等專屬您的定制慢病毒,同時也涵蓋CRISPR/Cas9敲除或激活文庫、自噬單標(biāo)或雙標(biāo)、螢光素酶現(xiàn)貨慢病毒產(chǎn)品。

 

結(jié)合九游會j9生物自主研發(fā)獲批專利的Vpack慢病毒包裝系統(tǒng),能夠攻克了病毒不出毒和滴度低的問題,能保證lncRNA表達(dá)更精確,載體熒光表達(dá)更亮,病毒出毒更穩(wěn)定。GMP級別的病毒質(zhì)?梢勻媛隳諤迥、體外對基因編輯的安全性要求,讓您在基因調(diào)控的道路上無后顧之憂。

  

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