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行業(yè)快訊

【WHO慢病毒整合拷貝數(shù)標準品】之標定方法解讀篇

時間:2020-04-10 熱度:

?喜報!九游會j9生物 作為國內領先的基因治療病毒載體CDMO企業(yè),參與世界衛(wèi)生組織(WHO)牽頭的、全球首個基于基因治療用慢病毒的標準品標定項目,并順利完成任務,為全球基因和細胞治療的發(fā)展貢獻自己的核心力量!

近年來,隨著Kymriah,  Yescarta 以及 Strimvelis等細胞治療產品陸續(xù)推上市。慢病毒作為細胞裝載CAR過程的關鍵中間載體,其整合拷貝數(shù)測定標準的確立更是亟待解決的關鍵問題。

目前,慢病毒整合拷貝數(shù)測定方法主要是定量PCR,該方法由于受標準品的選擇、引物序列的選擇以及反應條件等影響,導致不同實驗室之間檢測方法及檢測靈敏度存在巨大差異,這使其在臨床試驗、檢測以及不同實驗室之間的數(shù)據難以進行比較。

 

WHO-CS633項目是由WHO及英國國家生物制品檢定所(National Institute for Biological Standards and Control,NIBSC)發(fā)起,通過在全球范圍內不同實驗室對慢病毒感染后的HEK293T細胞基因組DNA進行拷貝數(shù)標定,進而確定慢病毒整合拷貝數(shù)國際標準品。該項目主要采用TaqMan qPCR,SYBRGreen qPCR及ddPCR(digital PCR)三種方法對5份凍干基因組DNA進行拷貝數(shù)的檢測。


 
1.研究方法

5種基因組DNA樣品編號分別為A/E(A和E是相同的樣品)、B、C和D,包含0、低、中或高不同拷貝數(shù),按下表(Table 1)說明進行制備后,使用qPCR對A/E、B、C、C1、C2、C3、C4和D 8個樣品及ddPCR對 A/E、B、C和D 4個樣品進行測試。其中qPCR方法采用同一個已知拷貝數(shù)的DNA標準品“NIBSC DNA standard”進行梯度稀釋制備慢病毒基因與內參基因(housekeeping,HK)標準曲線,從而計算慢病毒基因拷貝數(shù)與內參基因拷貝數(shù)。

每種方法由不同的操作員分別于3天進行3次獨立的實驗,收集各實驗室樣品的原始數(shù)據和定量結果(例如qPCR Ct值或ddPCR液滴計數(shù))進行分析。
 

實驗可接受標準范圍:
慢病毒基因標準曲線(LV)和內參基因標準曲線(HK)的R2≥0.98;
PCR的擴增效率(Eff%)應為0.9-1.1之間;
樣品C標曲斜率應在0.80-1.25范圍之內。
 
計算公式:
慢病毒基因拷貝數(shù)/單個細胞=(慢病毒基因插入拷貝數(shù)/內參基因拷貝數(shù))x內參基因目標序列拷貝數(shù)
 
 
2.結果分析
 

此次標定主要基于TaqMan qPCR、SYBRGreen qPCR和ddPCR 3種方法,共篩選收集了全球13個國家/地區(qū)的31個實驗室的檢測結果。

其中,29個實驗室采用TaqMan qPCR、13個實驗室采用SYBRGreen qPCR、11個實驗室采用ddPCR方法來評估慢病毒整合拷貝數(shù)(所有研究均使用參與標定實驗室的試劑和設備進行),最終獲得 60 組慢病毒基因組拷貝數(shù)檢測結果(包括 31 組TaqMan qPCR、15 組SYBRGreen qPCR和14組dd PCR數(shù)據),共計66名實驗人員參與到此次標定工作。

 
1)慢病毒整合拷貝數(shù)分析

對來自不同實驗室的38組qPCR和14組ddPCR的有效數(shù)據進行分析,結果表明各實驗室間qPCR 測定 (n=38)的 GCV 值在14.9%-20.2%之間,樣品B、C、D的LV copies/cell平均值分別為1.42(1.37 - 1.48)、8.76 (8.26 - 9.29)和10.67(10.05 -11.33),TaqMan qPCR與SYBRGreen qPCR結果相對一致,而兩種ddPCR(simplex ddPCR和multiplex ddPCR)之間存在差異(Table 2 和Figure 1)。

Table 2.  Summary of estimated LV copies per cell calculated using individual laboratories’ plasmid DNA standards or sample C as genomic DNA standard Method Sample Standard


 
2)樣品C作為標曲進行結果計算

用梯度稀釋的樣品C作為標曲,對未知樣品B和D進行計算。相較質粒標準品,樣品B和D qPCR結果的GCV值降低(樣品B的GCV值從15.7%降至11.5%,樣品D從19.5%降至16.2%);而對于ddPCR結果,樣品D的GCV值從25.9%降至4.8%,但樣品B的GCV值從12.1%增加到25.2%。

從qPCR和ddPCR(Multiplex)綜合分析,樣品B和樣品D的GCV值均存在降低(Table 3和Figure 1)。

Table 3. Inter-method variability in estimated copies/cell for qPCR(MS), qPCR(MT), ddPCR(M) and ddPCR(S)
 

此外,本項目對樣品B、C和D進行測序及含量測定(Nanodrop和QuBit),這對分析慢病毒的整合位點和基因組DNA定量提供了支持。

3.討論

整合分析來自全球31個不同實驗室的數(shù)據,整體研究數(shù)據質量較高(qPCR:38次有效數(shù)據/ 46次檢測實驗,ddPCR:所有數(shù)據均有效),qPCR檢測的單細胞慢病毒拷貝數(shù)有效數(shù)據在各實驗室間的GCV波動范圍較。鴇dPCR數(shù)據之間以及與qPCR數(shù)據對比存在差異。 

利用梯度稀釋的樣品C作為標曲,對未知樣品B和D進行計算。相較于質粒標準品,樣品B和D在實驗室間變異性減。適褂醚綜(基因組DNA)作為慢病毒整合拷貝數(shù)國際標準品,減少了不同實驗室使用質粒DNA標準品存在的潛在差異,可實現(xiàn)慢病毒整合拷貝數(shù)檢測在臨床試驗、檢測以及實驗室之間的標準化。

同時,該項目對用于慢病毒整合拷貝數(shù)國際標準品基因組DNA的制劑處方進行了篩。⒖疾熗8個月以上的穩(wěn)定性。研究表明,基因組DNA在經過長期(-20℃條件下)、高溫(56℃)、凍融操作后,其慢病毒整合拷貝數(shù)沒有顯著變化,表明該基因組DNA制劑可以在-20°C條件下長期儲存并保持穩(wěn)定。

九游會j9生物 有幸作為國內基因治療病毒載體CDMO企業(yè)參與到該項慢病毒標準品標定工作中,為推動慢病毒在臨床試驗、檢測以及不同實驗室之間的數(shù)據傳遞與共享貢獻力量。

不僅從中獲取經驗、展現(xiàn)中國力量,九游會j9生物 也同時為廣大基因治療研發(fā)企業(yè)帶來全球化視角和國際病毒生產標準,真正推動基因療法上市應用。

 
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