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有“毒”??jī)?nèi)毒素—rAAV載體的“毒”中“毒”

時(shí)間:2022-03-17 熱度:

 

 
 
重組腺相關(guān)病毒(recombinant Adeno-associated Virus, rAAV)在基因功能研究和基因治療遞送載體中占據(jù)主導(dǎo)地位,一直被認(rèn)為是最安全的病毒載體之一。然而研究顯示,在臨床前研究和臨床研究中,rAAV載體依然存在不同程度上的免疫反應(yīng),如誘導(dǎo)宿主免疫反應(yīng)、活化B細(xì)胞產(chǎn)生針對(duì)病毒衣殼的中和抗體、激活細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞反應(yīng)等。在rAAV載體生產(chǎn)過程中殘留的內(nèi)毒素可能是導(dǎo)致宿主免疫反應(yīng)的原因之一。
 
 

 

什么是內(nèi)毒素?

內(nèi)毒素(Endotoxin):又稱脂多糖(Lipopolysaccharide, LPS),由脂質(zhì)A、菌體特異性多糖和非特異性核心多糖三部分構(gòu)成,是革蘭氏陰性細(xì)菌細(xì)胞壁外壁的組成成分,單位EU/mL。內(nèi)毒素對(duì)宿主是有毒性的,脂質(zhì)A是內(nèi)毒素的主要毒性組分。
 

圖1 內(nèi)毒素分子結(jié)構(gòu)(紫色方框所示,圖片來源參考文獻(xiàn)4)

 

rAAV載體中為什么會(huì)含有內(nèi)毒素?

內(nèi)毒素的釋放是由細(xì)菌死亡自溶或粘附在其他細(xì)胞時(shí)造成的,也會(huì)發(fā)生在正常細(xì)胞生長(zhǎng)和分裂過程中。在rAAV載體制備過程中,內(nèi)毒素污染主要有兩種來源:細(xì)菌內(nèi)毒素和環(huán)境內(nèi)毒素。由于rAAV生產(chǎn)所需要的質(zhì)粒DNA是從大腸桿菌中分離提取的,因此質(zhì)粒DNA可能含有少量?jī)?nèi)毒素;同時(shí),rAAV制備過程中需轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞,而細(xì)胞的生長(zhǎng)分裂可能也會(huì)帶來內(nèi)毒素的產(chǎn)生;此外,生產(chǎn)過程中的環(huán)境污染可能亦會(huì)引入內(nèi)毒素。

 

rAAV載體中的內(nèi)毒素如何檢測(cè)?

根據(jù)藥物生產(chǎn)的規(guī)范要求,基于鱟試劑的內(nèi)毒素測(cè)定是檢測(cè)內(nèi)毒素殘留的金標(biāo)準(zhǔn)。鱟是一種海洋節(jié)肢動(dòng)物,身體呈青褐色,血液呈淡藍(lán)色,鱟的血液一遇到細(xì)菌就會(huì)凝固。因此,人們利用這一特點(diǎn)開發(fā)出鱟試劑,即將鱟血液中的變形細(xì)胞進(jìn)行溶解,將溶解物制成含有能被微量?jī)?nèi)毒素激活的凝固酶原產(chǎn)品,通過判斷內(nèi)毒素導(dǎo)致的渾濁效應(yīng)測(cè)試內(nèi)毒素含量。

 

通常,鱟試劑變性細(xì)胞溶液交聯(lián)測(cè)定的敏感度是0.06個(gè)單位的內(nèi)毒素EU/mL。測(cè)試樣品用重蒸水兩倍稀釋使用,測(cè)定試劑(11uL)加入到rAAV溶液,培養(yǎng)在37℃,60min,試管檢測(cè)膠塊的出現(xiàn),檢測(cè)陽性和陰性結(jié)果。

 

內(nèi)毒素對(duì)宿主的影響

內(nèi)毒素對(duì)宿主是有毒性的,即使是少量的內(nèi)毒素也可能會(huì)誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生免疫反應(yīng)。內(nèi)毒素可以與細(xì)胞膜上的受體結(jié)合引起免疫反應(yīng),激活組織內(nèi)的炎性細(xì)胞和炎癥因子的釋放,對(duì)細(xì)胞有較強(qiáng)的毒性作用,影響體內(nèi)外細(xì)胞的生長(zhǎng)和功能。在體內(nèi)環(huán)境下,內(nèi)毒素作用于哺乳動(dòng)物,可導(dǎo)致機(jī)體發(fā)熱,引發(fā)全身性炎癥反應(yīng),繼而引起彌散性血管內(nèi)凝血、休克、多臟器功能衰減等,最終導(dǎo)致死亡。因此,無論是涉及病毒載體的實(shí)驗(yàn)研究還是臨床應(yīng)用,九游會(huì)j9都需要盡量去除載體的內(nèi)毒素。

 

如何有效去除rAAV載體中內(nèi)毒素

在病毒的生產(chǎn)中,內(nèi)毒素的去除包括親和層析、緩沖液洗滌等方法,親和層析法去除內(nèi)毒素具有耗時(shí)、成本高、載體回收率差等缺點(diǎn)。緩沖液洗滌法則是借助超濾或離子交換色譜分離LPS膠束,經(jīng)過多次緩沖液交換洗滌,再用低速離心濃縮病毒培養(yǎng)液的方式去除rAAV載體內(nèi)毒素,該方法目前在部分rAAV血清型中適用。無論哪種方法都有一定的局限性,因此,從源頭上去除內(nèi)毒素至關(guān)重要。

 

基于12年、30000+的病毒生產(chǎn)經(jīng)驗(yàn),九游會(huì)j9生物持續(xù)優(yōu)化病毒生產(chǎn)全流程,建立標(biāo)準(zhǔn)三級(jí)細(xì)胞庫,每月更換細(xì)胞,保證代次,持續(xù)降低rAAV載體的內(nèi)毒素;同時(shí),九游會(huì)j9選擇GMP級(jí)的質(zhì)粒完成病毒包裝,從源頭上控制內(nèi)毒素的產(chǎn)生。在實(shí)際工作中,多次、隨機(jī)檢測(cè)的rAAV載體內(nèi)毒素含量均<2.5EU/ml,殘留標(biāo)準(zhǔn)超出行業(yè)普遍的<10EU/ml,為研究者提供更好的基因載體,讓基因遞送觸手可及。
 

 

 

 

 
 
 
 

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參考文獻(xiàn)

[1] Qingyun Zheng, et al., Low endotoxin E. coli strain-derived plasmids reduce rAAV vector-mediated immune responses both in vitro and in vivo. Mol Ther Methods Clin Dev. 2021 Jun 24;22:293-303.doi: 10.1016/j.omtm.2021.06.009.

[2]Liudmyla Kondratova, et al., Removal of Endotoxin from rAAV Samples Using a Simple Detergent-Based Protocol. Mol Ther Methods Clin Dev. 2019 Sep 6;15:112-119.doi: 10.1016/j.omtm.2019.08.013. 

[3]Jihad El Andari, et al., Production, Processing, and Characterization of Synthetic AAV Gene Therapy Vectors. Biotechnol J. 2021 Jan;16(1):e2000025.doi: 10.1002/biot.202000025.

[4] Rita F Maldonado, et al., Lipopolysaccharide modification in Gram-negative bacteria during chronic infection. FEMS Microbiol Rev. 2016 Jul;40(4):480-93.doi: 10.1093/femsre/fuw007. 

 

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